Исследование роста микромицетов на различных субстратах
Радиальная скорость роста A. flavus на различных
источниках углеродного питания значительно не изменялась. Фаза логарифмического
роста на среде с сеном приходится на 48 – 96 ч времени экспозиции, затем
скорость радиального роста уменьшается. На средах с листьями, камышом и корой наблюдается
замедленная лог–фаза, пик которой приходится на 192 ч времени культивирования.
Также, как и A. fumigatus, A. flavus не
использует опилки в качестве единственного источника углерода. На средах с
листьями и сеном вид растет с 2-суточной периодичностью. Биоритмы большей
продолжительности (3,5 – 4-х суток) отмечены на средах с камышом и корой. До 96
ч культивирования A. flavus на контрольных средах растет с
наименьшей скоростью радиального роста, затем в промежутке 96 – 144 ч
происходит интенсивная лог–фаза, и после 144 ч – радиальный рост колонии
уменьшается. На контрольных средах рост A. flavus
максимальный в середине экспозиции.
По данным рисунка 3 видно, что Alternaria на среде, где в качестве
единственного источника углерода присутствует кора, проявляет наибольшую
скорость роста с биоритмами 2-ое суток. На этой среде интенсивная лог – фаза
приходится на 48 – 96 ч, затем скорость роста уменьшается, и с 144 ч – цикл
повторяется. На среде с сеном Alternaria развивается с очень низкой скоростью и уже к 192 ч экспозиции прекращает
рост. На средах с листьями и камышом растет с одинаковой радиальной скоростью
роста до 96 ч культивирования, после на среде с листьями наступает стационарная
фаза. На среде с камышом происходит скачок роста примерно в 1,5 раза. С 144 ч радиальный
рост колоний на средах с листьями и камышом уменьшается. На этих средах Alternaria проявляет замедленную ритмичность
(более 2-х суток). На контрольных средах культура до 96 ч растет с низкой
скоростью роста, на промежутке 96 – 144 ч наблюдается фаза логарифмического
роста, затем радиальный рост штамма уменьшается.
Cladosporium sp. растет на среде с корой с наибольшей скоростью роста и с
периодичностью 2-ое суток. С 48 ч наступает фаза интенсивного роста, после 96 ч
экспозиции скорость роста убывает, и к 10-ти суткам культивирования рост на
этой среде прекращается. На среде с листьями микромицет растет с меньшей
ритмичностью (более 2-суточные биоритмы). До 96 ч происходит замедленная лог-
фаза, стационарная фаза отсутствует, затем радиальный рост колонии на этой
среде уменьшается. С наименьшей радиальной скоростью роста Cladosporium развивается на средах с камышом и
сеном с биоритмами четверо суток и к 192 ч экспозиции наступает фаза отмирания
культуры. На всех средах, за исключением контрольных рост штамма прекращается
еще до 14 дней культивирования. На контролях 1 и 2 рост примерно одинаковый со
средней скоростью роста.
Verticillium sp. на
средах с листьями и камышом в начале культивирования растет с одинаковой
скоростью роста с 2-суточными биоритмами. До 48 ч наблюдается фаза
инкубационного роста, затем рост культуры идет к убыванию. С 96 ч до 192 ч
экспозиции на этих средах происходит фаза стационарного роста, после рост
колонии снова уменьшается. На среде с корой микромицет растет с наибольшей
скоростью роста с периодичностью в 2-ое суток. На этой среде до 48 ч
наблюдается лог – фаза, затем наступает стационарная фаза роста. После рост
снова увеличивается в промежутке 96 – 144 ч, затем скорость роста падает.
Примерно с такой же радиальной скоростью роста Verticillium растет на среде с
сеном, но с замедленной ритмичностью (более 2-х суток). На контролях 1 и 2 рост Verticillium примерно одинаковый со средней
скоростью роста. С 48 ч до 96 ч культивирования длится фаза интенсивного
логарифмического роста, затем радиальный рост идет к уменьшению на среде
контроль 2. С 96 ч на контроле 1, а с 144 ч на контроле 2 наступает
стационарная фаза. После рост на этих средах увеличивается, и с 240 ч
культивирования скорость роста идет к падению.
Penicillium sp. – единственный из исследуемых
штаммов, использующий опилки в качестве единственного источника углерода. Рост
начинается с 48 суток культивирования, и развивается на этой среде с более
2-суточной периодичностью. На средах с листьями и камышом микромицет растет с
наибольшей радиальной скоростью роста и с 2-суточными биоритмами. К 192 ч
экспозиции на среде с листьями рост прекращается, наступает фаза отмирания
культуры, также как и на среде с сеном. Penicillium с наименьшей скоростью роста растет
на средах с корой и сеном с ритмичностью в 2-ое суток. На контрольных средах
рост максимальный, особенно на среде с сахарозой. На контроле 1 с 144 ч наблюдается
фаза логарифмического роста, после 192 ч рост культуры заметно падает. На
контрольной среде 2 штамм до 144 ч растет с низкой скоростью роста, затем
наступает стационарная фаза, после 192 ч экспозиции радиальный рост колонии
уменьшается.
Уже на первые сутки культивирования Trichoderma хорошо развивается на всех средах,
кроме среды с опилками, на которой роста колонии не обнаружено. На средах с
листьями, корой и камышом микромицет растет с 2-суточной периодичностью. На
этих средах в промежутке 48 – 96 ч происходит фаза усиленного логарифмического
роста, затем радиальный рост уменьшается. С очень низкой скоростью роста и с
замедленной ритмичностью (более 2-суточная) Trichoderma растет на среде с сеном. К 240 ч
культивирования рост на всех средах прекращается, за исключением среды с
листьями. Рост культуры на контрольных средах примерно одинаковый, до 96 ч
наступает лог – фаза роста, после скорость роста падает. С 144 ч до 240 ч
экспозиции радиальный рост снова увеличивается. В среднем скорость радиального
роста не превышает 0,4 мм/ч у всех штаммов, за исключением A. fumigatus, радиальный рост которого на листьях
достигает 0,8 мм/ч. Trichoderma sp. на
всех растительных субстратах растет с радиальной скоростью роста ниже 0,2 мм/ч.
Анализируя полученные данные, можно отметить предпочтения
исследуемых штаммов к тому или иному источнику углерода. Вид A. fumigatus предпочитает среду с листьями, A. flavus – среды с листьями и сеном, Alternaria, Cladosporium и Trichoderma sp. – среду с корой, Penicillium sp. –
среды с листьями, камышом и опилками. Большинство изученных штаммов обладали
2-суточными биоритмами. Необходимо отметить, что штаммы с наибольшей
продолжительностью биоритмов (более чем 2-ое суток) растут с невысокой
скоростью роста.
3.3 Прорастание спор в капле
субстрата
Результаты эксперимента по прорастанию спор исследуемых микромицетов
на поверхности растительных субстратах представлены на рисунке 4.
листья
|
кора
|
камыш
|
опилки
|
сено
|
Рис. 4. Зависимость прорастания спор микромицетов от времени
на природных целлюлозных гидролизатах.
Из рисунка 4 видно, что на всех субстратах с увеличением
времени экспозиции заметно возрастает процент прорастания спор. На гидролизате
листьев все грибы растут примерно с одинаковой скоростью, к 15-м суткам достигая
80 % прорастания от общего количества спор.
На гидролизате коры на 15-е сутки наблюдения видно, что
хорошо прорастают (80 %) почти все культуры, за исключением A. fumigatus (около 70%) и Trichoderma sp. (около
60%).
Наибольший процент прорастания (85 %) на гидролизате камыша
наблюдается у A. fumigatus. Остальные микромицеты растут
примерно с одинаковой скоростью, к 15-м суткам процент прорастания находится в
пределах 70-80 %.
На гидролизате опилок у Cladosporium sp. выявляется наибольший процент прорастания (более 80 %). У
Alternaria sp. и Verticillium sp. процент прорастания не достигает 70 %. Остальные культуры
прорастают в пределах 70 – 80 % от общего количества.
На протяжении всей экспозиции высокий процент прорастания на
гидролизате сена проявляют A. fumigatus, A. flavus (более 70 %) и Verticillium sp. (около 70 %). Остальные микромицеты растут примерно с
одинаковой скоростью, и к 15-м суткам наблюдения достигая 60 % прорастания.
При учитывании длин проростков, обнаружились следующие
особенности роста микромицетов: наибольшие длины проростков A. fumigatus обнаружены на гидролизатах камыша,
листьев; A. flavus, Trichoderma sp. – на коре и
листьях; Cladosporium sp., Verticillium sp. – на опилках,
коре и листьях; Alternaria sp. – на листьях; Penicillium sp. – на гидролизате коры.
ВЫВОДЫ
1) При определении способности
штаммов использовать модедьные источники углерода, было выяснено, что из
сахаров A. niger отдает предпочтение мальтозе; A. terreus, A. flavus и A. ustus предпочитают
среду с единственным источником углерода в виде галактозы, а A. fumigatus – среду с арабинозой. На крахмале и
многоатомных спиртах все исследуемые штаммы проявляли высокую скорость роста,
за исключением A. terreus, рост которого на среде с сорбитом
вообще не наблюдался. В среднем скорость радиального роста на сахарах не
превышает 0,4 мм/ч, а на других модельных субстратах составляет 0,2 мм/ч.
2) При определении способности штаммов использовать природные
растительные материалы в качестве единственного источника углерода, обнаружено,
что все штаммы также хорошо развиваются, как и на модельных субстратах. Только
опилки как единственный источник углерода использовал только Penicillium sp. В среднем скорость радиального
роста не превышает 0,4 мм/ч. Также можно отметить предпочтения исследуемых
штаммов к тому или иному источнику углерода. Вид A. fumigatus
предпочитает среду с листьями, A. flavus – среды с листьями и сеном, Alternaria, Cladosporium и
Trichoderma sp. – среду с корой, Penicillium sp. –
среды с листьями, камышом и опилками.
3) Определение способности микромицетов к ассимиляции
различных природных субстратов методом проращивания грибных зачатков выявило следующие
особенности роста микромицетов: наибольшие длины проростков A. fumigatus обнаружены на гидролизатах камыша,
листьев; A. flavus, Trichoderma sp. – на коре и листьях;
Cladosporium sp., Verticillium sp. – на опилках,
коре и листьях; Alternaria sp. – на листьях; Penicillium sp. – на гидролизате коры.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1)
Андреюк, Е. И.
Микробная коррозия и ее возбудители [Текст] / Е. И. Андреюк, В. И. Билай, Э. З.
Коваль, И. А. Козлова.
– Киев : Наук. думка, 1980. – 286 с. ; 22 см. – Библиогр.: с. 156. – 200 экз.
2)
Бабьева, И. П.
Изменения численности микроорганизмов в почвах при загрязнении тяжелыми металлами
[Текст] / И. П. Бабьева, С. В. Левин, Н. С. Решетова // Тяжелые металлы в
окружающей среде. – М. : Изд-во Моск. ун-та, 1980. – С. 115. – Библиогр.: с.
75.
3)
Бабьева, Е. Н.
Сравнительно-экологические исследования микромицетов из почв отдаленных географических
районов [Текст] / Е. Н. Бабьева // Микология и фитопатология. Сер. 17. – 1983. – № 2. –
С. 452-453. – Библиогр.: с. 452-453.
4)
Биоповреждения
[Текст] / Под ред. В. Д. Ильичева. – М. : Изд-во Моск. ун-та, 1987. – 352 с. ; 24 см. – Библиогр.: с. 207–208. – 200 экз. – ISBN
5-02634-675-3.
5)
Блажеевская, Ю.
В. Сравнительный анализ скорости радиального роста микромицетов, выделенных из
различных экотопов [Текст] / Ю. В. Блажеевская, В. В. Вембер, Н. Н. Жданова //
Микробиологический журнал. – 2002. – Т. 64. – № 3. – С. 3–11. – Библиогр.: с.
49-50.
6)
Богомолова, Е. В.
Морфологические особенности микроколониальных грибов, изолированных с
поверхности камня [Текст] / Е. В. Богомолова, М. С. Зеленская, Д. Ю. Власов //
Микология и фитопатология. Сер. 35. – 2001. - № 3. – С. 6–13. – Библиогр.: с. 17.
7)
Бухало, А. С.
Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре [Текст] / А. С. Бухало. – Киев
: Наук. думка, 1988. – 144 с. ; 21 см. – Библиогр.: с. 76. – 3000 экз.
8)
Великанов, Л. Л.
Некоторые биохимические аспекты в экологии грибов [Текст] / Л. Л. Великанов, И.
И. Сидорова // Успехи микробиологии. Сер. 3. – 1983. - № 18. – С. 112–132. – Библиогр.: с.
128.
9)
Воронин, Л. В.
Микрофлора некоторых видов рыб Куйбышевского водохранилища [Текст] / Л. В.
Воронин // Биология внутр. вод. – 1999 - № 76. – С. 11–15. – Библиогр.: с. 13.
10)
Гарибова, Л. В.
Основы микологии: Морфология и систематика грибов и грибоподобных организмов
[Текст] : учеб. пособие / Л. В. Гарибова, С. Н. Лекомцева – М. : Товарищество
научных изданий КМК, 2005. – 202 с. ; 25 см. – Библиогр.: с. 196–199. – 2000 экз. – ISBN 5-87317-265-X.
11)
Григорьев, А. М.
Изучение роста фрагментов мицелия Fusarium oxysporum в условиях
разной кислотности среды [Текст] / А. М. Григорьев, М. В. Горленко, О. Е.
Марфенина // Микология и фитопатология. – 2004. – № 3. – С. 29–35. – Библиогр.:
с. 30–31.
12)
Долгова, А. В.
Рост колоний Penicillium chrysogenum Thom. при постоянных и переменных температурах [Текст] /
А. В. Долгова, В. В. Зданович // Микология и фитопатология. Сер. 31. – 1997. - № 1. –
С. 52–56. – Библиогр.: с. 55.
13)
Дудка, И. А.
[Текст] Водные несовершенные грибы СССР / И. А. Дудка. – Киев : Наук. думка,
1985. – 188 с. ; 24 см. – Библиогр.: с. 154. – 1500 экз. – ISBN 5-137-06374-4.
14)
Евдокимова, Г. А.
Микробиологическая активность почв при загрязнении тяжелыми металлами [Текст] /
Г. А. Евдокимова // Почвоведение. – 1982. - № 6. – С. 125 – 132. – Библиогр.:
с. 130.
15)
Звягинцев, Д. Г.
Биология почв [Текст] : учебник / Д. Г. Звягинцев, И. П. Бабьева, Г. М. Зенова
– 3-е изд., испр. и доп. – М. : Изд-во МГУ, 2005. – 445 с. : ил. ; 25 см. – Библиогр.: с. 373–375 – 3000 экз. – ISBN
5-211-04983-7.
16)
Иванова, А. Е.
Жизнеспособность фрагментов мицелия почвенных микроскопических грибов в разных
экологических условиях [Текст] : автореф. канд. дис…; утверждена; защищена
30.03.99. / Иванова Анна Евгеньевна. – М. : МГУ, 1999. – 30 с.
17)
Иванова, А. Е.
Влияние экологических факторов на способность к росту фрагментов мицелия и
прорастание спор микроскопических грибов [Текст] / А. Е. Иванова, О. Е.
Марфенина // Микробиология. – 2001. – № 2. – С. 235–240. – Библиогр.: с. 236.
18)
Коваль, Э.З.
Микодеструкторы промышленных материалов [Текст] / Э. З. Коваль, Л. П.
Сидоренко. – Киев : Наук. думка, 1989. – 192 с. ; 22 см. – Библиогр.: с. 135-136. – 300 экз. – ISBN
5-015-02369-7.
19)
Кочкина, Г. А.
Радиальная скорость роста грибов в связи с их экологией [Текст] / Г. А.
Кочкина, Т. Г. Мирчинк, П. А. Кожевин, Д. Г. Звягинцев // Микробиология. –
1978. – № 5. – С. 964–965. – Библиогр.: с. 964.
20)
Кураков, А. В.
Методы выделения и характеристики комплексов микроскопических грибов наземных
экосистем [Текст] / А. В. Кураков, . – Москва : МАКСПресс, 2001. – 92 с. ;
21)
Лилли, В.
Физиология грибов [Текст] / В. Лилли, Г. Барнетт. – Москва : Изд-во иностр.
литературы, 1953. – 532 с. ; 25 см. – Библиогр.: с. 152, 174-184. – 2000 экз. –
ISBN 5-248-00487-4.
22)
Марьиновская, Ю.
В. Микробиологическая деструкция целлюлозосодержащих отходов [Текст] / Ю. В.
Марьиновская, Н. Н. Севастьянова // Микробиология. – 2006. - № 3. – С. 75 – 81.
– Библиогр.: с. 78.
23)
Методическое
пособие «Избранные задачи БОЛЬШОГО ПРАКТИКУМА». Часть 1. / АГТУ ; Сост. : С. В.
Еремеева, А. Н. Пархоменко – Астрахань, 2007 – 40 с.
24)
Мирчинк, Т. Г.
Почвенная микология [Текст]: учебник / Т. Г. Мирчинк : – М. : Изд-во МГУ, 1988.
– 220 с. ; 22 см. – Библиогр.: с. 154 -165. – 2940 экз. – ISBN 5-211-00157-5.
25)
Мюллер, Э.
Микология [Текст] / Э. Мюллер, В. Леффлер ; перевод с немецкого канд. биол.
наук К. Л. Тарасова. – М. : Мир, 1993. – 535 с. ; 25 см. – Библиогр.: с. 90-94, с. 139-140. – 2000 экз. – ISBN 5-214-01254-7.
26)
Ниязова, Г. А.
Концентрирование цинка и свинца различными микроорганизмами, обитающими в почве
Сумсарского свинцово-цинкового субрегиона [Текст] / Г. А. Ниязова, С. В.
Летунова, Б. Н. Золотарева // Микробиология. – 1982. – № 4. – С. 650-656. –
Библиогр.: с. 654.
27)
Паников, Н. С. Кинетика
роста микроорганизмов [Текст] / Н. С. Паников. – М. : Наука, 1991. – 309 с. ; 22 см. – Библиогр.: с. 245. – 1500 экз. - ISBN
3-271-00356-5.
28)
Пидопличко, Н. М.
Грибная флора грубых кормов [Текст] / Н. М. Пидопличко. – Киев : Наук. думка,
1953. – 482 с. ; 21 см. – Библиогр.: с. 246. – 700 экз.
29)
Практикум по
микробиологии [Текст] / Под ред. А. И. Нетрусова. – М. : Академия, 2005. – 608
с. ; 28 см. – Библиогр.: с. 239–240. – 5100 экз. – ISBN 5-7695-1809-X.
30)
Романов, Ю. А.
Биологические ритмы на разных уровнях биологической организации [Текст] / Ю. А.
Романов // Проблемы космической биологии. – 1980. - № 4. – С. 10–25. –
Библиогр.: с. 11.
31)
Саттон, Д.
Определитель патогенных и условно патогенных грибов : Пер. с англ. [Текст] :
учеб. пособие для вузов / О. Саттон, А. Фотергилл, М. Ринальди ; под общ. ред.
Д. Г. Звягинцев. – М. : Мир, 2001. – 487 с. ; 38 см. – Библиогр.: с. 472-474. –
350 экз. – ISBN 5-58974-358-1.
32)
Сычугова, О. В. Рост
и развитие микромицетов на сополимере этилена и винилацетата с добавками
крахмала [Текст] / О. В. Сычугова, Н. Н. Колесникова // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 16,
Биология. – 2003. – № 4. С. 27–31. – Библиогр.: с. 28.
33)
Терехова, В. А.
[Текст] Микромицеты в экологической оценке водных и наземных экосистем / В. А.
Терехова. – М. : Наука, 2007. – 215 с. ; 21 см. – Библиогр.: с. 33–35. – 2000 экз. – ISBN 5-453-06754-3.
Страницы: 1, 2, 3, 4, 5
|